Evaluación de la presencia de receptores celulares al virus de Influenza Aviar en oviductos de aves sujetas a muda forzada usando inmunofluorescencia

Elizabeth Castillo-Villanueva, Félix Sanchez-Godoy, Magdalena Escorcia

Resumen


Veterinaria México OA
ISSN: 2448-6760

Cómo citar este artículo:

  • Castillo Villanueva E, Sanchez Godoy F, Escorcia M. Evaluación de la presencia de receptores celulares al virus de Influenza Aviar en oviductos de aves sujetas a muda forzada usando inmunofluorescencia. Veterinaria México OA. 2017;4(1). doi: 10.21753/vmoa.4.1.416

Durante el 2012, un brote de Influenza Aviar de Alta Patogenicidad ocasionado por el subtipo H7N3, en México, infectó y ocasionó la muerte o el sacrificio de alrededor de 22 millones de aves ponedoras. Durante este periodo, el principal desafío de los avicultores fue asegurar el flujo de comercialización del huevo. Además de los protocolos sanitarios y de vacunación, se implementaron manejos de muda forzada en la zona afectada. Este manejo aseguró el mantenimiento de la producción de huevo en zonas cuarentenadas, pues disminuyó la mortalidad de las parvadas infectadas y reestimuló el retorno a la producción normal de huevo. Para entender cómo la muda forzada redujo la mortalidad de las aves infectadas, examinamos la distribución del receptor del virus de Influenza Aviar en el oviducto de gallinas sujetas a muda forzada. Evaluamos si los cambios en el tracto reproductivo causado por la muda forzada disminuyen la expresión del receptor específico en la membrana celular. La presencia de receptores específicos determina la susceptibilidad del hospedador al virus de Influenza. Utilizamos la técnica de inmunofluorescencia con la lectina Maackia amurensis para identificar la presencia del receptor viral en cortes histológicos de oviductos de aves en producción y en oviductos de aves con muda forzada. Los resultados mostraron la presencia y distribución de los receptores a Influenza Aviar. Observamos una fuerte señal de los receptores en los cortes histológicos de los oviductos de aves en producción. Por el contrario, la señal fue baja en los oviductos de aves sometidas a muda. Estos resultados demuestran una disminución en el número de receptores de aves sometidas a muda forzada. La falta de receptores afecta la infección y la replicación del virus, así como los daños inducidos por el virus en el oviducto, lo que podría ayudar a explicar la observación en el campo de que las aves infectadas con Influenza Aviar y sometidas a muda forzada sobreviven más que las aves a las que no se les somete a muda.

Figura 2. A. Se observa abundante expresión del receptor del virus de IA, marcado con fluorescencia verde manzana en las áreas apicales de las células de la mucosa del epitelio de la región del útero de oviductos de gallinas sanas en producción. Barra 100 µm. B. Receptores al virus de influenza (flechas), marcados por fluorescencia verde manzana, localizados en las células epiteliales de los ductos glandulares de la región de mágnum del oviducto del grupo de aves sanas en producción. Barra: 100 µm. C. Corte histológico de aves sanas sometidas a muda forzada. El receptor del virus de influenza, marcado con fluorescencia verde manzana, se observa en la región apical del epitelio de la mucosa; la intensidad de la fluorescencia es baja en intensidad a lo mostrado en la Figura 2A y 2B. Barr: 100 µm.

Palabras clave


influenza aviar; inmunofluorescencia; muda forzada; oviducto; pelecha; producción de huevo

Texto completo:

PDF PDF (English) HTML (English)

Referencias


Organización Mundial de la Salud Anima [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2012 [Available from: www.oie.int/en/animal-health-in-the-world/update-on-avian-influenza/2012/.

Diario Oficial de la Federación. Acuerdo Sanitario para la Erradicación de Influenza Aviar de Alta Patogenicidad H7N3. In: SAGARPA, editor. México D F: Secretaría de Gobernación; 2013.

Organización Mundial de la Salud Animal [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2013 [Available from: http://www.oie.int/es/sanidad-animal-en-el-mundo/actualizacion-sobre-la-influenza-aviar/2013/.

Kapczynski DR, Patin-Jackwood M, Guzman SG, Ricardez Y, Spackmen E, Bertran K, et al. Characterization of the 2012 highly pathogenic avian influenza H7N3 virus isolated from poultry in an outbreak in Mexico: Pathobiology and vaccine protection. J Virol. 2013;87(16):9086-96. doi:10.1128/JVI.00666-13.

Fouchier RA, Kawaoka Y, Cardona C, Compans RW, García-Sastre A, Govorkova EA, et al. Gain-of-function experiments on H7N9. Science. 2013;341(6146):612-3. doi:10.1126/science.341.6146.612.

Skehel JJ, Wiley DC. Receptor binding and membrane fusion in virus entry: The influenza hemagglutinin. Annu Rev Biochem. 2000;69:531-69. doi: 10.1146/annurev.biochem.69.1.531.

Sassaki GL, Elli S, Rudd TR, Macchi E, Yates EA, Naggi A, et al. Human (α2,6) and avian (α2,3) sialylated receptors of Influenza A virus show distinct conformations and dynamics in solution. Biochemistry. 2013;52:7217-30. doi:10.1021/bi400677n.

INEGI. Índice Nacional de Precios al Consumidor. In: Geografía INdEy, editor.México D. F.2016.

Sariözkan S, Güclü BK, Kara K, Gürcan S. Comparison of different molting methods and evaluation of the effects of postmolt diets supplemented with humate and carnitine on performance, egg quality, and profitability of laying hens. J App Poult Res. 2013;22(4):689-99. doi: 10.3382/japr.2012-00612.

Bell DD. Historical and current molting practices in the U.S. table egg industry. Poult Sci. 2003;82:965–70.

Organización Mundial de la Salud Animal [OIE]. Update on avian influenza Paris, France: OIE; 2016 [Available from: www.oie.int/en/animal-health-in-the-world/update-on-avian-influenza/2016/.

Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Norma Oficial Mexicana. Especificaciones técnicas para la producción, cuidado y uso de los animales de laboratorio. México D F: Universidad Nacional Autónoma de México; 2014.

Prophet EB, Mills B, Arrington JB, Sobin LH. Laboratory Methods in Histotechnology (Armed Forces Institute of Pathology). Washington D C, USA: American Registry of Pathology; 1992. 279 p.

França M, Stallknecht DE, Howerth EW. Expression and distribution of sialic acid influenza virus receptors in wild birds. Avian Pathol. 2013;42(1):60-71. doi:10.1080/03079457.2012.759176.

Eroschenko VP, Wilson WO. Histological changes in the regressing reproductive organs of sexually mature male and female Japanese quail. Biol Reprod. 1974;11:168-79.

Wang JY, Chen ZL, Li CS, Cao X, Wang R, Tang C, et al. The distribution of sialic acid receptors of avian influenza virus in the reproductive tract of laying hens. Molecular and Cellular Probes. 2015;29:129-34. doi: 10.1016/j.mcp.2015.01.002.

García A, Johnson H, Srivastava DK, Jayawardene DA, Wehr DR, Webster RG. Efficacy of inactivated H5N2 influenza vaccines against lethal A/Chicken/Queretaro/19/95infection. Avian Dis. 1998;42(2):248-56.




DOI: http://dx.doi.org/10.21753/vmoa.4.1.416

Enlaces refback

  • No hay ningún enlace refback.